Приказ Министра экологии, геологии и природных ресурсов Республики Казахстан от 18 октября 2022 года № 662 «О внесении изменения в приказ Министра окружающей среды и водных ресурсов Республики Казахстан от 4 апреля 2014 года № 104-Ө «Об утверждении Правил подготовки биологического обоснования на пользование животным миром»

Таблица 33. Характеристики исследованных водоемов

Таблица 34. Характеристика исследованных водоемов

138. Отбор проб на гидрохимический анализ производится по общепринятым методикам. При отборе проб измеряется температура воды, определяется прозрачность, содержание растворенного в воде кислорода, водородный показатель (рН). Пробы воды исследуются на содержание:

основных ионов (кальций, магний, калий-натрий, гидрокарбонаты, карбонаты, хлориды и сульфаты);

биогенные соединения (аммоний, нитраты, нитриты и фосфаты)

перманганатная окисляемость;

общее железо.

139. Результаты гидрохимического анализа представляются в виде таблиц (таблицы 35, 36). При многолетних исследованиях, приводится таблица, где представлены сведения за ряд лет, а также выполняется сравнительный анализ.

Таблица 35. Общая минерализация и содержание основных ионов в озерах

Таблица 36. Содержание органического вещества и биогенных соединений в озерах

140. На водоемах, являющихся местообитанием артемии, где имеются их промысловые запасы, высшая водная растительность, как правило, отсутствует и как следствие работы по изучению их в этом направлении не проводятся.

141. Исследования кормовой базы артемии (отбор проб фитопланктона) в рамках научно-исследовательских работ по определению общих допустимых объемов цист артемии, не проводятся. Данные работы проводятся только при проведении ежегодных мониторинговых исследований.

При проведении научных исследований, направленных на изучение запасов цист артемии, в отличие от аналогичных работ при определении запасов рыбных ресурсов, необходимо больше внимания уделить гидробиологическим исследованиям.

142. Пробы зоопланктона при глубинах более 2 метров отбирают тотальным обловом толщи воды малой сетью Джеди, если глубины менее 2 метров, то материал по зоопланктону собирается отцеживанием 100 литров воды через планктонную сеть Апштейна. В сетях используется мельничный газ № 49 - 55. Фиксация проб проводится раствором формалина. Пробы зоопланктона отбираются для изучения следующих параметров:

таксономический состав;

общая численность сообщества;

общая биомасса;

состав доминантов (доминирующих групп и видов);

численность основных групп и видов;

биомасса основных групп и видов.

143. Отбор проб бентоса (донные цисты) проводится дночерпателем Петерсена, с площадью захвата 1/40 метров². Отобранный грунт тщательно промывается через промывочную сеть, выполненную из специализированной ткани (с размерами отверстий 250-375 микрометр). После чего пробу помещают в емкости и фиксируют раствором формалина. Дальнейшая работа с пробами бентоса проводится в лабораторных условиях, где определяются следующие параметры:

таксономический состав;

общая численность сообщества;

общая биомасса;

состав доминантов (доминирующих групп и видов);

численность основных групп и видов;

биомасса основных групп и видов.

144. При изучении запасов цист артемии необходимо учитывать и запасы в береговых выбросах. В период проведения исследований осуществляется учет объема береговых выбросов в метрах³, и отбираются пробы для определения численности цист в 1 метр³.

145. Изучение гидробиологических проб начинается с определения таксономической принадлежности организмов с применением микроскопа. Численность особей в пробе устанавливается счетным методом с применением микроскопа. После обработки пробы производится пересчет на 1 метр³ (для планктонных проб и проб с береговых выбросов) и 1 метр² (для бентосных проб).

146. Результаты гидробиологических исследований приводятся в виде таблиц (таблица 37), в которых отражены видовой состав планктона и бентоса. Количественные показатели (численность и биомасса) основных групп организмов также представляются в виде таблиц (для зоопланктона и зообентоса отдельно). При проведении мониторинговых исследований при наличии сведений за ряд лет дается сравнительный анализ.

Таблица 37. Таксономический состав зоопланктона исследованных водоемов

147. При обработке гидробиологического материала в целях оценки состояния популяции артемии проводится изучение полового и возрастного состава: самки с цистами, самки без цист, самцы, предвзрослые, ювенильные, науплиусы, летние яйца и цисты. Для этого пробу делят на перечисленные выше группы и просчитывают каждую группу в отдельности с использованием микроскопа. Численность взрослых особей просчитывают полностью во всей пробе, цисты и науплиусы в пяти повторностях по 10 миллилитров с последующим пересчетом на весь объем пробы. Индивидуальные веса половозрелых рачков определяются прямым взвешиванием на торсионных весах с дискретностью 0,1 миллиграмм. Для остальных возрастных групп для расчета биомассы используются средние значения индивидуального веса, полученные в результате взвешивания всей группы и дальнейшего разделения на численность.

Если определить индивидуальные веса возрастных групп не представляется возможным, то для расчета ПДУ используются средние показатели индивидуальной массы разных возрастных групп определенные для озер Западной Сибири (таблица 38).

Таблица 38. Средние и предельные показатели индивидуальной массы разных возрастных групп артемии в озерах Западной Сибири

148. Результаты изучения популяции артемии заносятся в соответствующую таблицу, где помимо численности всех возрастных групп указывается и средняя численность цист в овисках самок (таблицы 39, 40).

Таблица 39. Численность (экземпляр/метр³) и биомасса (миллиграмм/метр³) возрастных групп артемии

Продолжение таблицы 39

Таблица 40. Численность (экземпляр/метр³) самок с цистами, цист в толще воды и плодовитость артемии (цисты)

149. При определении предельно допустимых уловов цист артемии (ПДУ), учитывая экологическую специфику соленых водоемов, возможно уточнение прогнозов, ранее определенных ПДУ, по итогам повторных исследований запасов цист артемии (при необходимости).

150. Определение запасов цист и общих допустимых уловов проводится в соответствии с методическими рекомендациями, разработанными Сибирским научно-исследовательским и проектно-конструкторским институтом рыбного хозяйства.

Подсчет общих запасов цист ведется по формуле 48:

где: W - общий запас цист (тонна); W₁ - запас свободноплавающих цист (тонна); W₂ - запас цист, находящихся в овисках самок (тонна); W₃ - запас цист, находящихся в береговых выбросах (тонна); W₄ - запас цист, находящихся на дне водоема (тонна).

Запас свободноплавающих цист, определялся по формуле 49:

где: V₁ - объем «жилой» зоны цист, миллион метров³; N₁ - численность свободноплавающих цист, тысячи экземпляров/метр³; m - масса сырой цисты, тонна.

Запас цист, находящихся в овисках самок, определялся по формуле 50:

где: V₂ - объем жилой зоны самок, миллион метров³; N₂ - численность половозрелых самок с цистами, тысячи экземпляров/метр³; R - остаточная плодовитость самок, экземпляр/особь; m - масса сырой цисты, тонна.

Запас цист находящихся в береговых выбросах, определялся по формуле 51:

где: V₃ - объем берегового выброса цист, метр³; N₃ - численность сырых цист в 1 метр³ объема, миллиард экземпляров/метр³; p - чистота выбросов; m - масса сырой цисты, тонна.

Запас цист, находящихся на дне водоема, определялся по формуле 52:

где: S - площадь озера, миллион метров²; N₄ - численность донных цист, тысячи экземпляров/метр²; m - масса сырой цисты, тонна.

Предельно-допустимый улов цист (в тоннах сырой массы) определялся по формуле 53:

где: 0,4 - коэффициент изъятия (0,4 - для малых озер, 0,5 - для средних озер, 0,6 - для крупных озер); W - общий запас цист; Р - доля примесей в сырье (при использовании промывочных комплексов Р=0,08)

Результаты приводятся в виде таблицы (таблица 41).

Таблица 41. Запасы и ПДУ цист артемии

151. По результатам проведенных исследований подготавливаются рекомендации по эффективному и рациональному использованию запасов цист артемии.

152. При определении предельно-допустимых уловов гаммаруса по многолетним наблюдениям основными факторами, лимитирующими численность и биомассу гаммарид являются: состав ихтиофауны, химический состав воды и степень эфтрофирования водоемов. В плотвично-окуневых озерах бокоплав не создает высоких концентраций. Плотва, окунь и другие рыбы интенсивно элиминируют его, препятствуя наращиванию биомассы. Вселение карпа или сиговых видов в водоемы, где гаммарус обитал в массовом количестве, также за 2-3 года приводит к подрыву его численности.

153. Научно-исследовательские работы, направленные на изучение запасов гаммаруса, сходны с определением запасов рыбных ресурсов, но имеют ряд особенностей. Исследования гидрологического, гидрохимического режима, отбор гидробиологических проб, сбор ихтиологического материала осуществляется, как и при проведении учета запасов рыбных ресурсов с небольшими изменениями, связанными с биологическими особенностями гаммаруса и характеристиками исследуемых водоемов. Работы по определению запасов гаммаруса включают в себя:

1) определение географического положения водоема;

2) изучение метеорологических условий в период сбора материала;

3) изучение морфометрических характеристик и исследование гидрологического режима водоемов;

4) изучение гидрохимического режима водоемов;

5) проведение гидробиологических исследований;

6) изучение состава и численности ихтиофауны;

7) расчеты запасов гаммаруса и определение общих допустимых уловов.

154. Определение количества и места расположения станций по отбору проб на водоемах проводится согласно методическим рекомендациям по сбору и обработке материалов при гидробиологических исследованиях. Координаты станций определяются с помощью навигационной системы GPS или ГЛОНАСС. Для получения достоверных результатов количество станций отбора проб должно быть не меньше (таблица 42).

Таблица 42. Количество станций для гидробиологических исследований в зависимости от площади водоема

155. На водоемах с высокой степенью изрезанности береговой линии количество станций отбора проб необходимо увеличить на две. При наличии заливов для них количество станций устанавливается отдельно. В целях повышения достоверности собираемого материала при выборе станций отбора проб необходимо учитывать гидрологические условия (мелководная и глубоководная зона), зарастаемость отдельных участков водоема и так далее. В отчете приводится карта-схема водоема со станциями наблюдений.

156. Сроки отбора проб должны быть связаны с жизненными циклами и изменениями условий обитания исследуемого объекта. Для определения запасов гаммаруса и подготовки прогноза ПДУ достаточно выполнение научно-исследовательских работ дважды в год, в зимний - ранневесенний период (январь - апрель) и в осенний период (август - октябрь).

157. В отчете в обязательном порядке приводятся географические сведения о водоеме (географические координаты, месторасположение с привязкой к населенным пунктам.). Географические координаты определяются с помощью навигационной системы GPS или ГЛОНАСС. Месторасположение с привязкой к населенному пункту определяется кратчайшим расстоянием от границы населенного пункта до береговой линии водоема. Сведения приводятся в виде таблицы (таблица 43).

Таблица 43. Координаты и месторасположение водоемов

158. Метеорологические исследования необходимо проводить на каждой станции отбора проб. В метеорологический журнал заносятся сведения о силе и направлении ветра, температуре воздуха, интенсивности солнечного света и силе волн с указанием даты, времени и координат определения метеорологических параметров. Часть метеорологических параметров определяется визуально, часть - с помощью специальных приборов.

159. Изучение морфометрических характеристик и гидрологического режима водоемов включает в себя определение следующих параметров:

характер водосборной площади, наличие и состояние притоков;

площадь водного зеркала;

длина и наибольшая ширина водоема;

длина береговой линии;

развитие береговой линии и наличие заливов;

максимальная и средняя глубина;

объем водной массы;

изменение уровня воды по сезонам и по годам (для водоемов, где осуществляется ежегодный мониторинг).

160. Изучение водосборной площади проводится путем визуальных наблюдений. Площадь акватории, длина береговой линии, длина и наибольшая ширина водоема определяется путем измерения на местности с помощью навигационной системы GPS или ГЛОНАСС. Промеры глубин проводятся с помощью лота по максимально возможному количеству станций; на водоемах где возможно применение эхолота, проведение батиметрических исследований проводится с его помощью. Уровень воды определяется с помощью навигационной системы, а его динамика отслеживается по установленной на водоеме линейке. Полученные результаты отражаются в виде таблицы (таблицы 44, 45).

Таблица 44. Характеристики исследованных водоемов

Таблица 45. Характеристика исследованных водоемов

161. Отбор проб на гидрохимический анализ производится по общепринятым методикам на всех станциях исследований. Пробы отбираются из поверхностного слоя воды (0,2 - 0,5 метров), а на водоемах с глубиной более 3 метров и из придонного слоя (при помощи пробоотборной системы и батометра). При отборе проб измеряется температура воды - у поверхности термометром, на глубине термометром в батометре. Также проводятся наблюдения за прозрачностью воды по диску Секки. Определение содержания растворенного в воде кислорода производится на месте оксиметром, водородного показателя - рН-метром. Пробы воды фиксируются и доставляются в лабораторию для последующего анализа по аттестованным методикам на содержание:

основных ионов (кальций, магний, калий-натрий, гидрокарбонаты, карбонаты, хлориды, и сульфаты);

биогенные соединения (аммоний, нитраты, нитриты и фосфаты);

перманганатная окисляемость.

Результаты представляются в виде таблицы, в которой отражены данные гидрохимического анализа (таблицы 46, 47). При многолетних исследованиях, дается таблица, где представлены сведения за ряд лет, а также приводится сравнительный анализ.

Таблица 46. Общая минерализация и содержание основных ионов в озерах

Таблица 47. Содержание органического вещества и биогенных соединений в озерах

162. При проведении научных исследований направленных на определение запасов и общих допустимых уловов гаммаруса необходимо изучить видовой состав высшей водной растительности, степень ее развития, а также площадь акватории, занятой жесткой и мягкой растительностью.

163. Пробы зоопланктона при глубинах более 2 метров отбирают тотальным обловом толщи воды малой сетью Джеди, если глубины менее 2 метров, то материал по зоопланктону собирается отцеживанием 100 литров воды через планктонную сеть Апштейна. В сетях используется мельничный газ № 55 - 70. Фиксация проб проводится раствором формалина. Пробы зоопланктона отбираются для изучения следующих параметров:

таксономический состав;

общая численность сообщества;

общая биомасса;

состав доминантов (доминирующих групп и видов);

численность основных групп и видов;

биомасса основных групп и видов.

164. Отбор проб бентоса проводится дночерпателем Петтерсена с площадью захвата 1/40 метров². Отобранный грунт тщательно промывается через промывочную сеть, выполненную из газа № 40. После чего, гидробионтов выбирают пинцетом, помещают в пенициллиновые флаконы и фиксируют раствором формалина. Дальнейшая работа с пробами бентоса проводится в лабораторных условиях, где определяются следующие параметры:

таксономический состав;

общая численность сообщества;

общая биомасса;

состав доминантов (доминирующих групп и видов);

численность основных групп и видов;

биомасса основных групп и видов.

165. Изучение гидробиологических проб начинается с определения таксономической принадлежности организмов с применением микроскопа. Численность особей в пробе устанавливается счетным методом с применением микроскопа. Биомасса зоопланктона определяется умножением численности организмов каждого вида на его индивидуальную массу и суммированием результатов по группам и сообществу в целом. Биомасса зообентоса определяется путем прямого взвешивания на весах с дискретностью, обеспечивающей достоверность измерений. После обработки пробы производится пересчет на 1 метр³ (для планктонных проб) и 1 метр² (для бентосных проб).

166. Результаты гидробиологических исследований приводятся в виде таблиц, в которых отражены видовой состав планктона и бентоса. Количественные показатели (таблица 48) основных групп организмов также представляются в виде таблиц (для зоопланктона и зообентоса отдельно). При проведении мониторинговых исследований при наличии сведений за ряд лет дается сравнительный анализ.

Таблица 48. Численность и биомасса (отдельно для планктона и бентоса)

167. Отбор проб для определения запасов гаммаруса проводится конусной сетью длиной 2,0 метра с входным кольцом диаметром 0,5 метра, изготовленной из ткани для сит № 10 - 12. Вырезание столба воды производится сверху при опускании сети со скоростью 0,3 - 0,4 метр/секунда. При опускании на дно данная сеть захватывает и ту часть популяции гаммарид, которая ведет бентосный образ жизни.

168. Численность особей в пробе определяется счетным методом, индивидуальную биомассу определяют путем взвешивания на весах с дискретностью не менее 0,001 грамма. Биомассу гаммаруса на отдельной станции определяют путем взвешивания на весах всех особей в пробе с дальнейшим пересчетом данной величины на единицу площади (1 метр²). Величину средней биомассы гаммаруса по водоему вычисляют как среднюю арифметическую по пробам. Результаты заносятся в таблицу (таблица 49).

Таблица 49. Численность и биомасса гаммаруса по станциям отбора проб и среднее значение по водоему

169. Ихтиологические исследования в рамках проведения научных работ по определению запасов гаммаруса сводятся к определению следующих характеристик:

видовой состав рыб;

количественные характеристики ихтиофауны (общая масса; длина от основания головы до конца чешуйного покрытия);

относительная численность.

Указанные характеристики состояния ихтиофауны определяются аналогично таковым при проведении работ по определению запасов рыбных ресурсов.

170. Величина ПДУ гаммаруса рассчитывается на основе двух показателей: общие запасы и процент изъятия. Подсчет общих допустимых уловов гаммаруса ведется по формуле (54):

где Y - общий допустимый улов гаммаруса в сыром виде (тонна);

B - средняя биомасса популяции гаммарид (тонна/гектар);

S - площадь водоема (гектар);

P/B - коэффициент (для популяций гаммарид в среднем равен (2);

K - коэффициент возможного изъятия части популяций (0,5)

Результаты приводятся в виде таблицы (таблица 50).

Таблица 50. Запасы и ПДУ гаммаруса

171. По результатам проведенных исследований подготавливаются рекомендации по эффективному и рациональному использованию запасов гаммаруса.

172. Определение предельно-допустимых уловов дафнии при проведении учетной съемки составляются схемы водоемов и планируется количество и расположение станций наблюдений. Определяются морфологические параметры водоемов - длина, ширина, площадь, средняя глубина. Параметры водоемов определяются с помощью инструментов программы Google Earth с корректировкой на местности с помощью спутникового приемника GPS и промером глубины водоема. На каждой станции проводятся наблюдения за прозрачностью воды по диску Секки, температурой поверхностного слоя воды (0,2 метров), а также метеорологические наблюдения.

173. Отбор проб воды на химический анализ проводится по общепринятым методикам. Пробы воды в консервированном виде доставляются в лабораторию для последующего химического анализа на содержание основных ионов и биогенов, а также некоторых физико-химических свойств. Определение состава и свойств воды проводится двумя методами - титриметрическим и колориметрическим по существующим методикам.

174. Пробы зоопланктона отбираются сетью Джеди или Апштейна вертикальным протягиванием от дна до поверхности. Консервированные пробы зоопланктона доставляются в лабораторию для последующего изучения следующих параметров:

видовой состав;

общая численность сообщества;

общая биомасса;

состав доминантов (доминирующих групп и видов);

численность основных групп и видов;

биомасса основных групп и видов;

количественное и качественное распределение по зонам.

175. Определяется численность и биомасса дафний в водоеме, распределение численности по зонам (биотопам) водоема.

176. Количественные показатели (численность, биомасса) приводятся сначала по каждой станции отдельно, а затем в целом по водоему (таблица 51).

Таблица 51. Значения численности и биомассы дафний

177. Общая (валовая) биомасса дафний в водоеме находится методом площадей (смотрите выше), только вместо площади в формулу 54 подставляется объем воды, процеженной сетью Джеди и объем воды в водоеме. При этом коэффициент уловистости сети Джеди близок к 1,0.

178. Определение предельно-допустимых уловов речных раков при проведении учетной съемки составляются схемы водоемов, и планируется количество и расположение станций наблюдений. Определяются морфологические параметры водоемов - длина, ширина, площадь, средняя глубина. Параметры водоемов определяются с помощью инструментов программы Google Earth с корректировкой на местности с помощью спутникового приемника GPS и промером глубины водоема.

179. В крупных водоемах со значительными глубинами плотность раков по акватории сильно различается, раки предпочитают глинистые побережья песчаным, с увеличением глубины их концентрация снижается, и они практически не встречаются глубже 6-7 метров. Поэтому, прежде всего, нужно определить площадь распространения раков по водоему и плотность их концентрации в различных биотопах. Это делается путем постановки раколовок различного типа и ставных сетей в различных участках водоема.

180. Раколовки расставляют на расстоянии не менее 5 метров друг от друга, на ночь, что связано с повышением активности раков в ночное время. Продолжительность лова составляет 12 часов. Пойманные раки подвергаются биоанализу и подсчету (таблицы 52, 53, 54).

Таблица 52. Результативность улова раков в различных орудиях лова

Таблица 53. Размерно-весовой состав раков

Таблица 54. Процентное соотношение раков по размерным группам

181. Для получения сведений о численности раков, на крупных водоемах используется метод прямого учета тралами (Каспийское море) и закидными неводами. Численность раков определяется методом площадей по различным биотопам:

где: N - численность раков в определенном участке водоема (биотопе), экземпляр;

n - численность раков в улове, экземпляр;

S - площадь биотопа;

s - обловленная площадь;

k - коэффициент уловистости орудия лова.

Затем численность раков по всем биотопам суммируется. Коэффициент уловистости орудия лова берется по литературным данным. Лов закидным неводом производится только в ночное время. Биомасса раков определяется как произведение расчетной численности и средней массы особей:

где: N - численность раков в водоеме, экземпляр;

B - общий запас, килограмм;

w - средняя масса, килограмм.

182. Отлов раков производится раколовками различного типа и модификаций, продолжительность экспозиции составляет 12 часов. Проверка орудий лова производится 2 раза в сутки: утром и вечером. Лов проводится до тех пор, пока суточный улов не будет близок к нулю. Численность раков в водоеме оценивается с использованием метода площадей:

где: N - численность раков в водоеме, экземпляр;

Y - плотность раков, экземпляр/метр²;

s - площадь распределения, метр².

183. Площадь распределения, где раки находят себе убежища и пищу, определяется эмпирически, путем пробных ловов. Для определения плотности исходят из величин суммарных уловов на контрольных участках заданной площади. Уловы суммируются, и полученный результат принимается за запас раков на контрольном участке. Для расчета плотности раков суммарный улов приводится к единице площади контрольного участка. Биомасса раков определяется как произведение расчетной численности и средней массы особей.

При расчете промыслового запаса речного рака для водоемов Казахстана учитываются только половозрелые особи, половозрелость которых наступает при длине 9-11 сантиметров.

Таким образом, промысловый запас рассчитывается по формуле:

где: M_(п) - промысловый запас, тонна;

М_(о) - общий запас, тонна;

М_(ю) - общая масса неполовозрелых особей, тонна.

184. Промысловое изъятие этого вида беспозвоночных, в силу его биологических особенностей, не должно превышать 30% от промыслового запаса. Исходя из этого, предельно допустимый объем изъятия раков рассчитывается по формуле:

где: ПДУ - предельно-допустимый объем изъятия, тонна;

М_(п) - промысловый запас, тонна;

К - коэффициент изъятия, величина равная 30 % или менее.

185. При методе определения граничных ориентиров запаса для выработки стратегии осторожного управления запасами по биологическим показателями состояния запаса популяций вида рыб являются критерии L_C50 и L_M50.

Равенство значений критериев L_C50=L_M50 является граничным ориентиром состояния запаса того или иного вида рыб в водоеме.

При L_C50 ≤ L_M50, при расчете ПДУ данного вида используются сниженные коэффициенты изъятия на данный вид рыбы в следующем календарном году должен быть меньше, чем в текущем году.

При L_C50 ≥ L_M50, при расчете ПДУ не требуется применение мер управления (понижения коэффициента изъятия) запасами рыб.

186. При стабильном состоянии популяции расчет ведется в соответствии с общепринятыми методами, при этом используются методы «Тюрина, Зыкова, концепция неоднородности популяций Малкина» и другие.

При достижении граничных ориентиров запаса по биологическим показателям рыб L_M50= L_C50, применяется формула Z=2F, то есть коэффициент изъятия F рассчитывается с коэффициентом 0,5 от коэффициента общей смертности Z.

При достижении граничных ориентиров запаса по конкретному виду рыб коэффициент изъятия для данного вида устанавливается, исходя из предельного возраста Т у рыб данного вида в уловах (выборке).

187. В таблице 55 приведены расчеты теоретических значений предельного возраста рыб при различных значениях коэффициента общей смертности (Z) и условии, что минимальная численность рыб составляет около 0,01 (1%).

Для расчета коэффициента изъятия по предельному возрасту рыб в уловах, необходимо использовать вспомогательную таблицу 56. Например, при предельном возрасте рыб данного вида в уловах (выборке) в 5 лет, коэффициент изъятия устанавливается F=0,3. При предельном возрасте 13 лет, коэффициент изъятия устанавливается F=0,15.

Таблица 55. Численность популяции рыб в зависимости от коэффициента общей смертности (годовой убыли) (в значениях от 0 до 1)

Таблица 56. Коэффициенты общей смертности Z (годовой убыли) и рекомендуемые коэффициенты изъятия F при достижении граничных ориентиров запаса, исходя из наблюдаемых значений предельного возраста рыб в уловах (выборке)

188. Водоемы в границах особо охраняемых природных территорий - непромысловые, в связи с чем определение для них ПДУ с коэфициентом изъятия, что и для промысловых водоемов, недопустимо. В этой связи, при расчете ПДУ применяется «предосторожный подход» с использованием коэффициентов изъятия, не выше указанных в пункте 186 настоящих Правил. При этом, объем изъятия для рекреационных целей, целей воспроизводства и научного лова устанавливается в пределах 10 % от определенного общепризнанными методами ПДУ (предельно допустимого улова).

189. Недостаток собранного материала по водоему местного значения с лимитом менее 10 тонн.

При обследовании большого количества водоемов небольшой площади и дефиците времени на исследования, зачастую не удается получить нужный объем биологической информации для разбивки численности рыб по возрастным группам. По методологии ВНИРО, это III уровень информационного обеспечения прогноза (наиболее низкий) - недостаточная полнота и (или) качество доступной информации.

При этом, допускается применение принципа Data Limited Methods - DLM.

Промежуточная процедура основана на методах коррекции величины ПДУ, полученной при последнем применении основной расчетной процедуры, с учетом наблюдаемых тенденций в динамике запасов.

При этом, обязательное уточнение запасов с инструментальной съемкой на водоеме производится раз в 3 года. Допустимо использование табличных коэффициентов изъятия (Малкина и другие).

190. Если в определенный календарный год водоем зарыбили одной генерацией рыб и при этом не было естественного воспроизводства, то возможно применение коэффициента изъятия 1,0, то есть изъятие всей ихтиомассы данной популяции при достижении ее особями промысловой навески.

191. Виды, которые самопроизвольно или намеренно проникли или внесены в водоемы (чужеродные виды), которые могут нанести ущерб биологическому разнообразию, в целях ограничения их дальнейшего распространения, применяется коэффициент изъятия, равный 1,0, то есть ПДУ устанавливается в объеме, равном промысловому запасу или общей биомассе популяций этих видов.

192. Фитопланктон.

1) Отбор проб.

Отбор проб фитопланктона для количественного учета производится специальными приборами - батометрами. В практике применяется сбор интегрированных проб фитопланктона. Для этого батометром (длина которого, как правило, составляет 0,5 метров) последовательно отбираются пробы через каждые 0,5 метров до максимальной глубины (до дна или глубины утроенной прозрачности). Отобранные пробы сливаются в сосуд, из которого берут интегрированную пробу для анализа (0,5-1 литр).

Для обнаружения единичных особей видов - индикаторов сапробности воды проводят лов фитопланктона путем процеживания определенного объема воды через планктонную сеть (номинальный размер отверстий до 100 микрометров) с помощью зачерпывания или протяжки. Сеть облавливает большие объемы воды, что позволяет выявлять крупноразмерные и колониальные виды, встречающиеся в водоеме в незначительных количествах.

При изучении фитопланктона из поверхностных слоев воды пробы отбирают, зачерпывая воду в сосуд определенного объема. Из водоемов бедных фитопланктоном, желательно отбирать пробы объемом не менее 1 литра, из водоемов, богатых фитопланктоном, - 0,5 литра, а из водоемов при «цветении» воды - даже 0,25 литра.

Пробы фитопланктона фиксируются 40 % раствора формалина из расчета достижения конечной концентрации в 4 %. Большие концентрации формалина вызывают деформацию водорослей и изменение цвета их пигмента. Используется также раствор Люголя с добавлением формалина или специально разработанного фиксатора. Проба этикетируется по принятой форме, регистрируется в полевом журнале и акте отбора проб.